描述

BGAL-Streptavidin β-半乳糖苷酶标记链霉亲和素

产品标签

Streptavidin 链霉亲和素（链亲和素）；Avidin 亲和素；链霉亲和素-生物素放大系统；Streptavidin Magbeads 链霉亲和素免疫磁珠；CAS：9013-20-1

产品信息

温馨提示：见我司整理的链霉亲和素及其标记物（Streptavidin and Streptavidin Conjugates）产品专题

产品描述

链霉亲和素（Streptavidin），分子量约为60kDa，来源于阿维丁链霉菌（Streptomyces avidinii）的一种细菌蛋白，高度特异性结合生物素（biotin），亲和常数（Kd）为10-15M。作为一种四聚体蛋白，可同时结合4个生物素分子，该功能与鸡蛋清来源的亲和素（avidin）具很高的相似性。然而，不同于亲和素，链霉亲和素是一种非糖基化蛋白，基本不带电荷，而亲和素在中性pH条件下呈碱性，比较而言链霉亲和素的非特异性结合远低于亲和素，这样检测时链霉亲和素的非特异性背景明显低很多。目前，生物素检测通常用链霉亲和素替代亲和素。

β-半乳糖苷酶（β-Galactosidase，BGAL，EC 232-864-1），由大肠杆菌lacZ基因编码表达的一种常用的报告酶，能够用于遗传，分子和免疫检测系统。活化的β-半乳糖苷酶能切割底物分子X-gal（5-bromo-4-chloro- indolyl-β-D-galactopyranoside，5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-吡喃半乳糖苷）形成明亮的蓝色产物，通过显色技术被检测到。

本品为β-半乳糖苷酶BGAL标记的链霉亲和素（BGAL-conjugated Streptavidin），可用于生物素标记的抗体、核酸、蛋白或其他生物素标记分子的检测，用在ELISA，免疫组化（IHC），蛋白印迹（WB）或生物素化核酸探针的实验。是一种方便且高度灵敏和特异性的检测系统。

本品以液体形式供货，含甘油保护剂，推荐稀释倍数参考下表。实际操作需根据具体情况做适当调整。

推荐使用浓度

保存与运输方法

保存：2-8℃保存，或置于-20℃长期保存，至少一年有效。

运输：冰袋运输。

注意事项

1）本品含叠氮钠，操作时请注意安全防护，不要直接接触眼睛、皮肤等。

2）为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

Streptavidin 链霉亲和素（链亲和素）；Avidin 亲和素；链霉亲和素-生物素放大系统；Streptavidin Magbeads 链霉亲和素免疫磁珠；CAS：9013-20-1

产品信息

链霉亲和素磁珠（Streptavidin Magnetic Beads）采用专利的蛋白偶联技术将链霉亲和素（SA）共价连接于固相载体表面，可高效结合生物素化抗体、核酸、蛋白等配体分子。本品采用超顺磁性微球，粒径均一，形貌规整，有利于方便快捷的捕获目标分子以及实现磁性分离。本品还能配套自动化设备进行高通量操作。

本品为结合5 µm粒径磁珠的链霉亲和素，浓度为10mg/ml，保存于1×PBS，0.1%（v/v）Tween-20，0.1%（w/v）NaN3溶液。

产品特性

1）同义名：Streptavidin Magbeads链霉亲和素免疫磁珠；链霉亲和素磁珠；

2）与游离生物素结合能力：600 pmol/mg磁珠

3）与与生物素化单链寡核苷酸（24nt）结合能力：200 pmol/mg磁珠

4）与生物素化IgG结合能力：10 pmol/mg磁珠

5）磁珠表面：亲水基团

6）保存缓冲液：10mg/ml in 1×PBS，0.1%（v/v）Tween-20，0.1%（w/v）NaN3

保存与运输方法

保存：2-8°C保存，1年有效。

运输：冰袋运输。

注意事项

1. 避免对磁珠进行冷冻操作；
2. 为减少磁珠损失，每次磁性分离的时间应不少于1min；
3. 吸取磁珠前需要先充分震荡将其重悬均匀，且操作过程中避免产生气泡；
4. 建议使用质量好的移液器吸头和反应管，避免因粘附磁珠及溶液造成的损失；
5. 生物素化分子的大小会影响磁珠的载体。用户需根据实验确定磁珠对特定生物素化分子的载量；
6. 生物素化分子的加入量应为磁珠载量的1-2倍，以使磁珠饱和；
7. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

操作步骤

1. 需要材料

1.1 缓冲液：以下为常用的缓冲液成分，用户可根据需要调整缓冲液的盐浓度及pH。

Buffer I（适用于结合生物素化核酸）：10 mM Tris-HCl（pH 7.5），1 mM EDTA，1 M NaCl，0.01%~0.1% Tween-20

Buffer II（适用于结合生物素化抗体/蛋白）：1×PBS，pH 7.4，含0.05% Tween-20，可根据需要添加0.01%~0.1% BSA

1.2 磁性分离器：可选用磁性分离器，适用于1.5 mL、2 mL或15 mL离心管

1.3 漩涡振荡器

1.4 旋转混合仪

1.5 移液器及吸头

1.6 合适的离心管

2. 结合生物素化核酸

2.1. 将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20 s，振荡重悬磁珠。用移液器移取100 μl磁珠到新的离心管中。将离心管置于磁性分离器上，静置1 min（此操作后续简称为磁性分离），用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管。

【注意】：用户可根据生物素化分子的多少，参考产品特性中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1~2倍，使磁珠饱和。

2.2. 加入1 ml Buffer I到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁性分离，移去上清液。

【备注】：当步骤2.1取用磁珠体积大于1 ml时，加入与磁珠体积相同的Buffer I。

2.3. 重复“步骤2.2”一次。

2.4. 加入500 μl用Buffer I稀释的生物素化核酸（使磁珠浓度为2 mg/ml），充分振荡重悬磁珠。将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合30 min。

2.5. 磁性分离，将上清液转移至新的离心管。

2.6. 按“步骤2.2”的方法洗涤磁珠三次。

2.7. 根据后续实验的要求，加入合适的低盐缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化核酸步骤完成。磁珠可用于后续操作。

2.8. 用户可以通过测定反应前后核酸的浓度，计算结合到磁珠上的核酸量﹝（反应前浓度-反应后浓度）×反应溶液体积﹞。

3. 结合生物素化抗体/蛋白

3.1 将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20 s，振荡重悬磁珠。用移液器移取100 μl磁珠到新的离心管中。磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管。

【注意】：用户可根据生物素化分子的多少，参考产品特性中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1~2倍，使磁珠饱和。

3.2 加入1 ml Buffer II到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁性分离，移去上清液。

【注意】：当步骤3.1取用磁珠体积大于1 ml时，加入与磁珠体积相同的Buffer II。

3.3 重复“步骤3.2”两次，共洗涤三次。

3.4 加入1 ml用Buffer II稀释的生物素化抗体/蛋白（使磁珠浓度为1 mg/ml），充分振荡重悬磁珠。将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合60 min。

3.5 磁性分离，将上清液转移至新的离心管。

3.6 按“步骤3.2”的方法洗涤磁珠五次。

3.7 根据后续实验的要求，加入Buffer II或其他合适的缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化抗体/蛋白步骤完成。磁珠可用于后续操作。

相关产品

1、链霉亲和素（Streptavidin），Unconjugated

2、链霉亲和素（Streptavidin），Conjugated

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Streptavidin 链霉亲和素（链亲和素）；Avidin 亲和素；链霉亲和素-生物素放大系统；Streptavidin Magbeads 链霉亲和素免疫磁珠；CAS：9013-20-1

产品信息

产品描述

链霉亲和素磁珠（Streptavidin Magnetic Beads）采用专利的蛋白偶联技术将链霉亲和素（SA）共价连接于固相载体表面，可高效结合生物素化抗体、核酸、蛋白等配体分子。本品采用超顺磁性微球，粒径均一，形貌规整，有利于方便快捷的捕获目标分子以及实现磁性分离。本品还能配套自动化设备进行高通量操作。

本品为结合5 µm粒径磁珠的链霉亲和素，浓度为10mg/ml，保存于1×PBS，0.1%（v/v）Tween-20，0.1%（w/v）NaN3溶液。

产品特性

1）同义名：Streptavidin Magbeads链霉亲和素免疫磁珠；链霉亲和素磁珠；

2）与游离生物素结合能力：600 pmol/mg磁珠

3）与与生物素化单链寡核苷酸（24nt）结合能力：200 pmol/mg磁珠

4）与生物素化IgG结合能力：10 pmol/mg磁珠

5）磁珠表面：亲水基团

6）保存缓冲液：10mg/ml in 1×PBS，0.1%（v/v）Tween-20，0.1%（w/v）NaN3

保存与运输方法

保存：2-8°C保存，1年有效。

运输：冰袋运输。

注意事项

1. 避免对磁珠进行冷冻操作；
2. 为减少磁珠损失，每次磁性分离的时间应不少于1min；
3. 吸取磁珠前需要先充分震荡将其重悬均匀，且操作过程中避免产生气泡；
4. 建议使用质量好的移液器吸头和反应管，避免因粘附磁珠及溶液造成的损失；
5. 生物素化分子的大小会影响磁珠的载体。用户需根据实验确定磁珠对特定生物素化分子的载量；
6. 生物素化分子的加入量应为磁珠载量的1-2倍，以使磁珠饱和；
7. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

操作步骤

1. 需要材料

1.1 缓冲液：以下为常用的缓冲液成分，用户可根据需要调整缓冲液的盐浓度及pH。

Buffer I（适用于结合生物素化核酸）：10 mM Tris-HCl（pH 7.5），1 mM EDTA，1 M NaCl，0.01%~0.1% Tween-20

Buffer II（适用于结合生物素化抗体/蛋白）：1×PBS，pH 7.4，含0.05% Tween-20，可根据需要添加0.01%~0.1% BSA

1.2 磁性分离器：可选用磁性分离器，适用于1.5 mL、2 mL或15 mL离心管

1.3 漩涡振荡器

1.4 旋转混合仪

1.5 移液器及吸头

1.6 合适的离心管

2. 结合生物素化核酸

2.1. 将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20 s，振荡重悬磁珠。用移液器移取100 μl磁珠到新的离心管中。将离心管置于磁性分离器上，静置1 min（此操作后续简称为磁性分离），用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管。

【注意】：用户可根据生物素化分子的多少，参考产品特性中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1~2倍，使磁珠饱和。

2.2. 加入1 ml Buffer I到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁性分离，移去上清液。

【备注】：当步骤2.1取用磁珠体积大于1 ml时，加入与磁珠体积相同的Buffer I。

2.3. 重复“步骤2.2”一次。

2.4. 加入500 μl用Buffer I稀释的生物素化核酸（使磁珠浓度为2 mg/ml），充分振荡重悬磁珠。将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合30 min。

2.5. 磁性分离，将上清液转移至新的离心管。

2.6. 按“步骤2.2”的方法洗涤磁珠三次。

2.7. 根据后续实验的要求，加入合适的低盐缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化核酸步骤完成。磁珠可用于后续操作。

2.8. 用户可以通过测定反应前后核酸的浓度，计算结合到磁珠上的核酸量﹝（反应前浓度-反应后浓度）×反应溶液体积﹞。

3. 结合生物素化抗体/蛋白

3.1 将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20 s，振荡重悬磁珠。用移液器移取100 μl磁珠到新的离心管中。磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管。

【注意】：用户可根据生物素化分子的多少，参考产品特性中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1~2倍，使磁珠饱和。

3.2 加入1 ml Buffer II到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁性分离，移去上清液。

【注意】：当步骤3.1取用磁珠体积大于1 ml时，加入与磁珠体积相同的Buffer II。

3.3 重复“步骤3.2”两次，共洗涤三次。

3.4 加入1 ml用Buffer II稀释的生物素化抗体/蛋白（使磁珠浓度为1 mg/ml），充分振荡重悬磁珠。将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合60 min。

3.5 磁性分离，将上清液转移至新的离心管。

3.6 按“步骤3.2”的方法洗涤磁珠五次。

3.7 根据后续实验的要求，加入Buffer II或其他合适的缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化抗体/蛋白步骤完成。磁珠可用于后续操作。

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