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CAS NO：4091-99-0 Reactive Oxygen Species (ROS) Assay Kit 活性氧（ROS）检测试剂盒

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Reactive Oxygen Species，ROS活性氧；DCFH-DA；JC-1线粒体模电位探针；JC-10；CAS NO：4091-99-0；

产品订购：

  货号                                                                                                            规格                   
  Reactive Oxygen Species (ROS) Assay Kit 活性氧（ROS）检测试剂盒      100~500T   

研究意义：

活性氧（Reactive Oxygen Species，ROS）包括超氧自由基、过氧化氢、及其下游产物过氧化物和羟化物等，参与细胞生长增殖、发育分化、衰老和凋亡以及许多生理和病理过程。

产品描述：

活性氧检测试剂盒（Reactive Oxygen Species Assay Kit，或ROS Assay Kit）是一种利用荧光染料DCFH-DA（2,7-Dichlorodihydrofluorescein diacetate）进行细胞内活性氧水平检测的常用方法。检测原理在于DCFH-DA本身无荧光，能自由穿过细胞膜，一旦进入细胞后，被胞内的酯酶水解生成无荧光的DCFH。DCFH不能穿透细胞膜，从而保留在胞内。此时胞内的活性氧可以氧化DCFH生成有荧光的DCF。通过DCF荧光的强弱即可反映活性氧的水平。

本试剂盒包含活性氧阳性对照Rosup，利于活性氧的检测。Rosup是一种混合物，浓度为50mg/ml。因检测对象和反应体系的不同，本试剂盒可检测100-500个样品。

产品组成：

 组分编号         组分名称                                              规格               储存方法
 MX4801-A  活性氧探针DCFH-DA（10mM）  0.1ml  -20℃避光保存
 MX4801-B  活性氧阳性对照（Rosup, 50mg/ml）  1ml  -20℃保存
— —  产品说明书

1份

保存与运输方法：

保存：-20ºC保存，有效期一年。

运输：冰袋运输。

使用方法

1. 装载探针

【注意】：对于刺激时间较短（通常2h以内）的细胞，先装载探针，后用活性氧阳性对照Rosup和/或待研究药物刺激细胞；对于刺激时间较长（通常6h以上）的细胞，先用活性氧阳性对照Rosup或待研究药物刺激细胞，后装载探针。

1.1 原位装载探针（仅适用于贴壁细胞）

1）检测前一天进行细胞铺板，确保活性氧检测当天细胞汇合率达到50~70%。

2）吸出细胞培养液，加入适量体积以及浓度的待研究药物，于37ºC细胞培养箱内孵育，具体诱导时间根据细胞类型和药物自身特性决定。

【可选】阳性对照Rosup：先用无血清培养液按照1:1000比例稀释阳性对照，通常37℃培养箱内刺激20~30min可以观察到显著的活性氧水平提高，但依细胞类型会有比较明显差异【刺激时间可参考文献或实验经验来调整】。如果刺激后30min内未观察到活性氧水平升高，可以适当提高Rosup的工作浓度；反之，如果活性氧升高过快，则适当降低Rosup的工作浓度。

3）按照1:1000用无血清培养液稀释DCFH-DA（10mM），使其终浓度为10μM.。吸出细胞培养液，加入适当体积DCFH-DA工作液。【注意】：加入体积以能充分盖住细胞为宜。对于6孔板，每个孔加入DCFH-DA工作液不少于1ml。对于96孔板，每个孔加入DCFH-DA工作液不少于0.1ml。

4）37ºC细胞培养箱内孵育20min。

5）用无血清细胞培养液洗涤细胞三次，以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。

1.2 收集细胞后装载探针

1）按照常规方法，清洗并收集足量的细胞。【注意】：保证细胞的状态健康。

2）用适量体积以及浓度的待研究药物重新悬浮细胞，于37ºC细胞培养箱内孵育，具体诱导时间根据细胞类型和药物自身特性决定。【可选】阳性对照Rosup：先用无血清培养液按照1:1000比例稀释阳性对照，通常37℃培养箱内刺激20~30min可以观察到显著的活性氧水平提高，但依细胞类型会有比较明显差异【刺激时间可参考文献或实验经验来调整】。如果刺激后30min内未观察到活性氧水平升高，可以适当提高Rosup的工作浓度；反之，如果活性氧升高过快，则适当降低Rosup的工作浓度。

3）探针装载前，按照1:1000用无血清培养液稀释DCFH-DA（10mM），使其终浓度为10μM.。

4）离心，吸出细胞内刺激药物，之后用适量DCFH-DA工作液重悬细胞，使得细胞密度为1×106~2×107/ml。【注意】：细胞密度需根据后续检测体系，检测方法，以及检测总量来调整。例如，对于流式分析，单管检测内细胞数目控制在104~ 106之间。

5）37ºC细胞培养箱内孵育20min。每隔3~5min颠倒混匀一下，使探针和细胞充分接触。

6）用无血清细胞培养液洗涤细胞三次，以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。

2. 检测

2.1 原位装载法

可用激光共聚焦显微镜直接观察，或收集细胞后用荧光分光光度计、荧光酶标仪或流式细胞仪检测。

2.2 收集细胞后装载法

可用荧光分光光度计、荧光酶标仪或流式细胞仪检测，也可用激光共聚焦显微镜直接观察。

3. 参数设置

使用488nm激发波长，525nm发射波长，实时或逐时间点检测刺激前后荧光的强弱。DCF的荧光光谱和FITC非常相似，可用FITC的参数设置检测DCF。

4. 其他说明

1）对于某些细胞，若发现没有刺激的阴性对照细胞荧光也比较强，可以按照1:2000～1:5000稀释DCFH-DA，使DCFH-DA的工作浓度为2～5μM。探针装载时间也可依情况在15～60min内适当进行调整。

2）Rosup仅仅用于作为阳性对照的样品，并不是在每个样品中都需加入Rosup阳性对照。

注意事项

1）探针装载后，一定要洗净残余的未进入细胞内的探针，否则会导致背景较高。

2）探针装载完毕并洗净残余探针后，可以进行激发波长的扫描和发射波长的扫描，以确认探针的装载情况是否良好。

3）尽量缩短探针装载后到测定所用的时间（刺激时间除外），以减少各种可能的误差。

4）为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。