Annexin V-APC/7-AAD细胞凋亡检测试剂盒是一款用来检测细胞凋亡的试剂盒,流式细胞仪进行检测

Annexin V-APC/7-AAD细胞凋亡检测试剂盒(Annexin V-APC/7-AAD Apoptosis Detection Kit)是一款用来检测细胞凋亡的试剂盒,可以用流式细胞仪进行检测。本试剂盒包含APC标记的Annexin V,用来检测早期细胞凋亡;以及7-氨基放线菌素D(7-AAD),用来检测坏死细胞。

本试剂盒的工作原理在于:磷脂酰丝氨酸(Phosphotidylserine,PS)是一种带负电荷的磷脂。正常细胞中,PS位于细胞膜内面,但当凋亡开始后,PS在磷脂双分子层中的不对称分布逐渐消失并转移到细胞膜表面,从而暴露在细胞外环境中。膜联蛋白V(Annexin V)是一种分子量约35kDa的钙离子依赖性磷脂结合蛋白,能非常容易的结合PS,且具有高度的亲和性。因此,通过Annexin V与PS的结合与否来判断凋亡发生。另外,7-AAD的引入能辅助区分凋亡早期细胞和晚期凋亡或坏死细胞。7-AAD作为一种活细胞排斥探针,不能穿透具有完整细胞膜的正常细胞或凋亡早期细胞,但能穿透丧失细胞膜完整性的凋亡晚期细胞或坏死细胞,从而将细胞核染红。因此,将Annexin V-APC与7-AAD联合使用时,呈现结果为:正常细胞(Annexin V-APC-/7-AAD-),早期凋亡细胞(Annexin V-APC+/7-AAD-);晚期凋亡细胞和坏死细胞同时呈现双阳性(Annexin V-APC+/7-AAD +)。

产品组成

组分编号 组分名称 保存方法 产品货号(规格)
30T 100T
A Recombinant Annexin V-APC 2-8℃避光 150μl 500μl
B 7-AAD Viability Staining Solution 2-8℃避光 300μl 1ml
C 5× Binding Buffer 2-8℃避光 5ml 15ml
D Apoptosis Inducer Control 2-8℃避光 5ml 5ml

保存与运输方法

保存:2-8℃保存,不可冰冻。其中组分A,B需避光保存。1年有效。

运输:冰袋运输。

注意事项

1) 对于贴壁细胞,需要很好掌控消化步骤。细胞凋亡诱导时贴壁细胞如有漂浮细胞,需同时收集漂浮细胞和贴壁细胞合并染色。处理贴壁细胞时要小心,尽量避免人为造成的细胞损伤。胰酶消化时间过短,细胞需要用力吹打才能脱落,容易造成细胞膜的损伤,导致7-AAD摄入过多;而胰酶消化时间过长,细胞膜也易造成损伤,甚至会影响细胞膜PS与Annexin V的结合。消化时将胰酶铺满孔板底后,轻摇使胰酶与细胞充分接触,之后倒掉大部分胰酶,利用残留的少量胰酶再消化一段时间,待细胞间空隙增大,瓶底呈花斑状即可终止。消化液中尽量不用EDTA,EDTA会影响Annexin V与PS的结合。

2) 实验中不建议固定细胞,因固定过程可能导致荧光淬灭。

3) 由于细胞凋亡是一个快速过程,染色后请尽快检测,时间过长会导致凋亡或坏死细胞数量增加。

4) 若样品来源于血液,务必先去除血液中的血小板。因为血小板含有PS,会与Annexin V结合产生假阳性。可使用含EDTA的缓冲液并低速离心去除血小板,之后再用Annexin V binding buffer清洗细胞,以避免残留的EDTA螯合钙离子。

5) 荧光物质易发生淬灭,试剂储存和操作过程中尽量避光。荧光检测时也尽量缩短观察时间。

6) 7-AAD为潜在致癌物,操作时请做好防护措施,避免与皮肤、眼睛的直接接触。

7) 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用方法

一、 试剂准备

1× Binding Buffer的准备:取足量5× Binding Buffer用去离子水稀释到1× Binding Buffer(比如,1ml 5× Binding Buffer加4ml去离子水稀释),混匀均匀,4℃或冰上预冷待用。

1×PBS的准备:自行配制或直接购买商业化的PBS Buffer。4℃或冰上预冷待用。

二、 仪器参数校正

2.1 收集1-3×106个细胞,用1×PBS离心清洗2次,弃上清。

2.2 加入500μl Apoptosis Inducer Control重悬细胞,于冰上孵育30min。

2.3 加入1×PBS离心清洗1次,弃上清。

2.4 加入适量1× Binding Buffer重悬,并加入等量且未经处理的活细胞,轻轻混合。用1× Binding Buffer补充至1.5ml,等分成3管,其中1管为空白对照管,另2管为单染管。

2.5 单染管分别加入5μlAnnexin V-APC或10μl7-AAD,室温避光孵育15min。

2.6 在流式细胞仪上,用空白管调节前向散射光(Forward Scatter,FSC)、侧向角散射光(Side scatter ,SSC) 和荧光通道的电压,并在此电压条件下,用单染管调节荧光通道的补偿。

三、 染色步骤

3.1 细胞样品的准备:

a)对于贴壁细胞:小心收集细胞培养液到一干净离心管内备用。 用不含EDTA的胰酶消化细胞至细胞可以被轻轻用移液管或枪头吹打下来时,加入前面收集的细胞培养液,吹打下所有的贴壁细胞,并轻轻吹散细胞。再次收集到离心管内。1000rpm离心5min,沉淀细胞。对于特定的细胞,如果无法完全离心至管底,可以适当延长离心时间或稍稍加大离心速度。小心吸除上清,可以残留约50µl左右的培养液,以避免吸走细胞。加入1ml 4℃预冷的PBS,重悬细胞,再次离心沉淀细胞,小心吸除上清。

b)对于悬浮细胞:1000rpm离心5min沉淀细胞。对于特定的细胞,如果无法完全离心至管底,可以适当延长离心时间或稍稍加大离心速度。小心吸除上清,可以残留约50µl左右的培养液,以避免吸走细胞。加入1ml 4℃预冷的PBS,重悬细胞,再次离心沉淀细胞,小心吸除上清。

3.2 用1× Binding Buffer重新悬浮细胞沉淀并调整浓度为1×106-1×107个细胞/ml。

3.3 取100µl的细胞悬液到5ml流式管中,加入5µl Annexin V-APC和10µl7-AAD混匀,室温避光孵育15min。

3.4 无需清洗,每管加入385µl1× Binding Buffer,混匀,尽快(<1h)用流式细胞仪完成检测。

四、染色检测

对于Annexin V-APC(Ex=633nm,Em=660nm),用流式细胞仪的FL4通道检测;对于7-AAD-DNA复合物(Ex=546nm,Em=647nm;能被488nm激光器激发,最大发射波长为647nm),用流式细胞仪的FL3通道检测。

常见问题

1) Annexin V/7-AAD凋亡试剂盒能够用于检测人或其他动物的细胞凋亡情况?

回复:可以,因Annexin V特异性结合PS,而PS在不同种属间无差异。

2)贴壁细胞做凋亡用胰酶消化对细胞膜有损伤?

回复:低浓度胰酶消化,轻柔吹打贴壁细胞2~3次,4℃,1000rpm离心5min, 处理得当的话, 胰酶造成损伤可以控制在 5%以内,在有对照组的情况下对实验结果不会造成明显影响。也可以使用非常温和的Accutase消化酶(#MX2001-100ML),能更大程度的保护细胞膜完整性。

3)贴壁细胞可先染7-AAD然后再消化吗?这样是否可减少由于消化液造成的细胞膜损伤而染上7-AAD的误差?

回复:先加 7-AAD不仅染色是否每组都均匀充分很难判断, 而且7-AAD本身对细胞也是有毒性的, 对实验结果影响会比胰酶大,不建议这样做。

4)为什么只能用不含 EDTA的胰酶消化贴壁细胞,用含 EDTA的胰酶消化细胞对结果有什么影响?

回复:因Annexin V是钙离子依赖性的磷脂结合蛋白,EDTA是一种金属螯合剂。因此EDTA的加入会影响Annexin V活性,进而影响结果。

5)Annexin V-APC/7-AAD凋亡试剂盒是否适合荧光显微镜检测?

回复:本试剂盒经流式细胞仪检测能得到理想的染色结果。对于荧光显微镜未经内部检测,理论上若荧光显微镜配有适当的滤片是可行的。研究人员可尝试使用,方法参考文献。

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