Lyticase from Arthrobacter luteus 酵母溶壁酶,来自藤黄节杆菌


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Lyticase from Arthrobacter luteus 酵母溶壁酶,来自藤黄节杆菌

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Lyticase 溶壁酶;Zymolyase® 酵母细胞壁溶解酶;Yeast lytic enzyme 酵母裂解酶;Glusulase;Protoplast 原生质体;Spheroplast 原生质球;

产品信息

    产品名称 产品编号 规格             价格(元)   
    Lyticase from Arthrobacter luteus 酵母溶壁酶,来自藤黄节杆菌     MF0210-25KU 25KU 855
MF0210-100KU    100KU 3210

产品描述

Lyticase,中文名细胞壁溶解酶,溶壁酶,能水解聚β(1→3)-葡萄糖(poly-β(1→3)-glucose)比如酵母细胞壁葡聚糖。酵母细胞很难破坏,因为细胞壁可能形成荚膜或耐性孢子。通过使用裂解酶比如溶壁酶(lyticase)、几丁质酶(chitinase)、细胞壁溶解酶(zymolyase)和葡聚糖酶(gluculase)诱导部分原生质球形成,然后接下来酵母细胞被裂解释放DNA。溶壁酶(lyticase)更适合用于消化酵母细胞壁和产生转化用真菌来源的原生质球。本品以冻干粉形式供应,比活力≥200 units/mg solid。

产品特性

1)CAS NO:37340-57-1

2)来源:藤黄节杆菌(Arthrobacter luteus)

3)外观:冻干粉

4)同义名:Lyticase;酵母细胞壁溶解酶;酵母细胞壁溶解酵素;溶壁酶;破壁酶;

5)作用谱:报道显示lyticase有效溶解以下菌株包括 Ashbya, Candida, Debaryomyces, Eremothecium, Endomyces, Hansenula, Hanseniaspora, Kloeckera, Kluyveromyces, Lipomyces, Metschikowia, Pichia, Pullularia, Torulopsis, Saccharomyces, Saccharomycopsis, Saccharomycodes, and Schwanniomycesspecies.

6)比活力:≥200 units/mg solid

7)单位定义:3ml反应混合液中以酵母细胞悬液为底物,于25 °C,pH 7.5条件下,每分钟使得ΔA800发生0.001变化所用的酶量即为一个酶活力单位(unit)。

8)溶解性:易溶于水

酶活力测定方法

1. 实验试剂制备

1.1  超纯水(≥18 MΩxcm resistivity at 25 °C)

1.2  磷酸缓冲液(67mM磷酸钾缓冲液,pH 7.5,25℃):用超纯水配制9.1mg/ml磷酸二氢钾溶液,用1M KOH调整pH至7.5(25 °C)。

1.3  底物(0.4% w/v啤酒酵母(酿酒酵母)悬浮液)

a)使用研钵和研杵研磨适量酵母菌以得到超过800mg的酵母粉。研细的粉末粒径需在25-35网目尺寸。

b)用超纯水加入酵母粉制备4mg/ml酵母溶液。

c)室温条件300rpm搅拌酵母溶液~2h。【注意】:更高速度搅拌会引起酵母细胞的过早裂解;

d)2h后停止搅拌,使得更大沉淀静置下去。小心吸取上方2/3的悬浮液到一个新的烧杯内。去除更大沉淀能够在进行分光光度计读数时,降低信噪比。

e)进行实验前需要确定底物浓度。测定酵母混合液和超纯水的A800,吸光度比值在0.6-1.0之间。如有必要,通过改变酵母粉量或超纯水来调整吸光度比值。

f)室温条件300rpm混匀底物,能稳定保存高达8h。

1.4  酶溶液

使用前,用冰超纯水配置500 units/ml溶壁酶溶液。【注意】:对一些粗制酶(lyticase)可能需要超过15min使其溶解。短时间超声1-15s能够促进酶溶解,但不会影响酶活性。

2. 反应程序

3ml反应体系中,各组分最终浓度是34 mM磷酸钾,~0.12%(w/v)啤酒酵母,25-35 units溶壁酶

2.1  按下表吸取各组溶液到5ml离心管内,

试剂

测试组T1(ml)

测试组T2(ml)

测试组T3(ml)

空白组(ml)

超纯水

0.55

0.54

0.53

0.60

磷酸缓冲液

1.50

1.50

1.50

1.50

底物

0.90

0.90

0.90

0.90

2.2  颠倒混合上述各管溶液,并于25 °C平衡5min。然后加入酶溶液。

试剂

测试组T1(ml)

测试组T2(ml)

测试组T3(ml)

空白组(ml)

酶溶液

0.050

0.060

0.070

2.3  立即颠倒混匀上述各管溶液,记录下~10min后下降后的A800。非常重要的是要即刻混匀所有比色皿试剂,并依此测定各管A800。

2.4  以2min为检测时间段,记录下每个测试组的最大线性比率ΔA800/min。每个测试组的最大线性比率需要用空白组来校正。校正后的ΔA800/min应在0.025-0.035范围内,才能保证后续结果的可靠性。如果不在此范围内,可通过调整适当酶溶液并重复读数。

3.  测定结果

3.1 计算1:

3.2 计算2:

保存与运输方法

保存:-20℃干燥保存,至少1年有效。

运输:冰袋运输。

注意事项

为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

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